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Western 免Y印跡(Western Blot)是將蛋白質轉移到膜上,然后利用抗體進行檢測的實驗。在WB 實驗中常會出現(xiàn)各種問題,而拖慢實驗速度,使實驗達不到理想的效果。今天百螢跟各位同學一起分享下 WB 實驗中各種問題及問題建議。
常見問題 |
可能原因 |
建議 |
電泳條帶成笑臉狀 |
膠不均勻冷切,中間冷卻不好,電泳系統(tǒng)溫度偏高 |
減少電壓減慢電泳速度,在冷室或者冰浴中進行電泳 |
電泳條帶成皺眉狀 |
可能是由于裝置不合適,特別可能是凝膠和玻璃擋板底部有氣泡,或者兩邊聚合不完全 |
調整裝置 |
拖尾 |
樣品溶解不好 |
樣品充分溶解混勻后上樣 |
紋理(縱向條紋) |
樣品中含有不溶性顆粒 |
樣品充分攪拌混勻 |
條帶偏斜 |
電極不平衡或者加樣位置偏斜 |
調整電極和加樣 |
條帶兩邊擴散 |
加樣量過多 |
適當減少上樣量 |
Marker 變黑色 |
抗體和 Marker 蛋白反應 |
在 Marker 和 sample 之間空出一個孔不上樣 |
背景高 |
膜封閉不夠 |
延長封閉時間,選擇適宜的抗體稀釋度 |
一抗稀釋度不適宜 |
對抗體進行滴度測試,選擇適宜的抗體稀釋度 |
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一抗孵育的溫度偏高 |
建議 4℃ 結合過夜 |
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二抗?jié)舛榷冗^高 |
降低二抗?jié)舛?/span> |
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二抗的非特異性背景 |
增加一個二抗對照,不加一抗,其他操作過程不變,即可驗證背景是否是由于二抗所致。可選擇其它二抗(特異性更強的,只針對重鏈) |
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二抗孵育時間過久 |
減少二抗孵育時間 |
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選擇膜的問題 |
硝酸纖維素的背景會比 PVDF 膜低 |
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膜在實驗過程中干過 |
實驗過程中要注意保持膜的濕潤 |
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檢測時曝光時間過長 |
注意曝光時間的縮短 |
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洗膜不充分 |
增加洗膜的時間和次數(shù) |
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抗體和封閉蛋白有交叉反應 |
檢測抗體與封閉蛋白的交叉反應性,選擇無交叉反應的封閉劑。洗滌液中加入 Tween-20 可減少交叉反應 |
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雜帶較多 |
目的蛋白有多個修飾位點(磷酸化位點,糖基化位點,乙?;稽c等),本身可以呈現(xiàn)多條帶 |
查閱文獻或進行生物信息學分析,獲得蛋白序列的修飾位點信息,通過去修飾確定蛋白試劑大小 |
目的蛋白有其他剪切本 |
查閱文獻或生物信息學分析可能性 |
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樣品處理過程中目的蛋白發(fā)生降解 |
裂解液中加入蛋白酶抑制劑,樣品處理在冰上進行 |
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上樣量過高,太敏感 |
適當減少上樣量 |
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一抗不純 |
純化抗體 |
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一抗特異性不高 |
重新選擇或制備高特異性的抗體 |
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二抗的非特異性結合 |
增加一個二抗對照,不加一抗,其他操作過程不變,即可驗證背景是否是由于二抗所致??蛇x擇其它二抗(特異性更強的,只針對重鏈) |
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一抗或二抗?jié)舛绕?/span> |
降低抗體濃度 |
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細胞傳代較多,導致蛋白變異 |
使用原代或傳代少的細胞作對照 |
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蛋白條帶位置 (大?。┎粚?/span> |
二聚體或多聚體存在 |
增加蛋白質變性過程及強度 |
翻譯后剪切 |
比如很多蛋白是以前體蛋白的形式合成的,在執(zhí)行功能時需要進行剪切成活化的形式 |
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相對電荷 |
氨基酸電荷的組成 |
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蛋白修飾 |
比如糖基化、磷酸化等修飾狀態(tài)會導致蛋白分子量增加 |
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膠濃度 |
不同濃度的膠跑出的蛋白條帶的位置可能有所偏差 |
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無蛋白條帶 |
抗體孵育不充分 |
增加抗體濃度,延長孵育時間 |
酶失活 |
直接將酶和底物進行混合,如果不顯色則說明酶失活了。選擇在有效期內、有活性的酶聯(lián)物 |
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標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低 |
設置陽性對照,如果陽性對照有結果,但標本沒有則可能是標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低??煽紤]增加標本上樣量解決靶蛋白含量低的原因 |
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試劑之間不匹配 |
一抗與組織種屬,一抗與二抗或/和底物與酶系統(tǒng)之間不匹配。通過設置內參照可以驗證二級檢測系統(tǒng)的有效性 |
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一抗失效 |
選擇在有效期內抗體,幷選擇現(xiàn)配現(xiàn)用的工作液 |
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HRP 抑制劑 |
所用溶液和容器內避免含有疊氮化鈉 |
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抗體不能識別測試種屬的相關蛋白 |
購買抗體前應認真閱讀抗體說明書,確定其是否能夠交叉識別測試種屬的對應蛋白 |
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二抗與一抗不匹配 |
選擇針對一抗來源種屬的抗體 |
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蛋白條帶信號弱 |
抗體孵育不充分 |
增加抗體濃度,延長孵育時間 |
酶活性降低 |
直接將酶和底物進行混合,如果不顯色則說明酶失活了。選擇在有效期內、有活性的酶聯(lián)物 |
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洗膜過度 |
洗膜時間不宜過長,加入的去垢劑不宜過強或過多,建議使用 0.1% 的弱去垢劑 Tween-20 |
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標本中靶蛋白含量太低 |
增加樣本上樣量 |
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抗體活性降低 |
選擇有效期內的抗體,工作液現(xiàn)配現(xiàn)用,避免長時間放置 |
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蛋白轉移不充分 |
可以用麗春紅染膜幷結合染膠(考馬斯藍)后確定條帶是否轉移到膜上或轉移過度,適當調整轉膜的時間和電流 |
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封閉過度 |
減少封閉劑的量或縮短時間,換用不同封閉劑類型 |
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曝光時間過短 |
延長曝光時間 |
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HRP 抑制劑 |
所用溶液和容器內避免含有疊氮化鈉 |
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背景有黑色斑點 |
抗體與封閉試劑反應 |
使用前過濾封閉試劑 |
HRP 偶聯(lián)二抗中有聚集體 |
過濾二抗試劑,去除聚集體 |
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暗背景上白色帶 |
HRP 含量過高 |
降低酶聯(lián)二抗的濃度 |
背景有不均勻的白色斑點 |
轉膜過程中有氣泡存在 |
仔細檢測,避免存在氣泡 |
抗體分布不均勻 |
孵育抗體時使用搖床 |
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